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產(chǎn)品課堂

故書百回讀深思子自知——MIQE指南對qPCR實驗中核酸紫外測定的要求-上

       在影響實時定量反應檢測靈敏度、準確性和可靠性的眾多因素中,核酸模板品質(zhì)與含量無疑具有決定性作用。核酸品質(zhì)(quality)是指核酸的純度(DNA/RNA、蛋白質(zhì)、酚等PCR抑制劑的殘留)和完整性(Integrity)符合要求并保持穩(wěn)定。核酸的量是指用于反應的ng或μg核酸質(zhì)量或拷貝數(shù)?;虮磉_定量分析中,加入相同質(zhì)量的總RNA、確保每個qPCR反應孔的cDNA模板含量均一,以確保測試值真實反映mRNA 實際水平差異、排除因cDNA用量不同所致誤差。SNP基因分型檢測中模板數(shù)量過少將影響等位基因數(shù)據(jù)有效性。而NGS測序前對測序文庫模板數(shù)量均一化是保證數(shù)據(jù)質(zhì)量不可或缺的質(zhì)控手段。 

       2009年發(fā)布的定量PCR實驗數(shù)據(jù)發(fā)表所必需實驗信息最低限度標準(Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments) ,即MIQE指南,明確了qPCR實驗發(fā)表時作者所需提供的最低信息標準,以保證實驗數(shù)據(jù)的正確性、準確性和實驗結(jié)果的可重復性。指南從qPCR樣本的采集、處理和制備,核酸質(zhì)量控制,反轉(zhuǎn)錄、qPCR體系設定及數(shù)據(jù)分析的各環(huán)節(jié)具體要求都有詳盡闡述,為全球生命科學與生物醫(yī)學的國際化標準《生物和生物醫(yī)學調(diào)查的最小信息》(Minimum Information for Biological and Biomedical Investigations, MIBBI)的重要組件。

       本文圍繞MIQE指南的核酸質(zhì)量控制環(huán)節(jié)中與微量紫外可見光度計應用有關(guān)的論述內(nèi)容,結(jié)合目前學術(shù)期刊qPCR實驗文章所披露的實際操作辦法,探討如何在qPCR實驗流程核酸質(zhì)控中充分發(fā)揮微量紫外可見分光光度計測定功能的問題。

一、核酸品質(zhì)對實時熒光定量PCR測試性能的影響

       MIQE指南中的核酸質(zhì)量控制(QC of Nucleic Acids)首先是指核酸模板的完整性(integrity,是指核酸特別是RNA的降解程度)、純凈度(核酸樣品中其他核酸模板可能干擾測定結(jié)果、抑制逆轉(zhuǎn)錄活性或PCR反應的污染物的殘留情況)的評估。其次,是qPCR反應過程核酸數(shù)量的測定和控制。

1.1 完整無降解的RNA模版是qRT-PCR結(jié)果可靠性的關(guān)鍵

       mRNA與機體所受內(nèi)外環(huán)境條件刺激和生理狀態(tài)息息相關(guān),其含量具高度動態(tài)性。組織器官生理結(jié)構(gòu)、取樣的時間和材料的管理環(huán)節(jié)的差異同樣影響RNA的降解。降解引起的基因轉(zhuǎn)錄水平相對差異可能會對實驗結(jié)果的評價產(chǎn)生誤導。

       在RNA完整性對RT-qPCR檢測性能影響的評價實驗中,用酶消化或紫外線處理的方法降解從牛組織中提取的完整RNA后,對18S rRNA、28S rRNA、β-Actin、IL-1b基因表達mRNA的測定結(jié)果顯示,來自同一組織的完整RNA和降解RNA樣本之間,測試值的穩(wěn)定性存在顯著差異。從高豐度18S和28S rRNA,中等豐度的β-Actin,到極低豐度的IL-1b,出現(xiàn)隨著RNA品質(zhì)提升而mRNA樣本定量結(jié)果變異性 (intraassay variation)降低的現(xiàn)象。

MIQE指南核酸完整性評估-RNA凝膠電泳分析.jpg

       RNA完整性具有組織細胞依賴性、時間特異性和基因特異性。一般認為,結(jié)締組織含量高的組織(如胃腸道)、富含RNase的器官(如胰臟),在取樣、存儲過程中RNA降解較高;細胞來源RNA樣品完整性要好于從實體組織提取的RNA。

       研究顯示,降解RNA樣本測試數(shù)據(jù)變異存在高度的組織、基因特異性。某些組織中mRNA定量似乎不受RNA降解的影響,從部分降解的RNA樣本獲得的基因表達譜與完整RNA樣本相比,具有高度相似性。但有些組織mRNA數(shù)量與RNA質(zhì)量評分指數(shù)RIN存在線性關(guān)系或存在RIN指數(shù)閾值響應關(guān)系(即部分樣品無法給出準確的測定結(jié)果)。

       MIQE指南總結(jié)為:擴增片段長達400bp時,擴增效果強烈依賴于優(yōu)質(zhì)RNA。而多數(shù)情況下,即便對70-250bp短擴增子qPCR測定,耐受RNA降解程度的能力也不盡相同(即RNA完整性受損不是啥好事)。定量RT-PCR分析,高品質(zhì)RNA可縱橫捭闔、暢行無阻,而部分降解的RNA適合于短擴增子反應。因此,想要準確地量化組間微小表達差異,在定量分析前驗證和審視RNA質(zhì)量是有益的且極其重要。

 

1.2 RNA品質(zhì)對qRT-PCR擴增效率的影響

       即使是完整RNA、優(yōu)化的引物及反應體系, 若RNA樣品中PCR抑制物濃度過高,同樣會降低qPCR檢測靈敏度和擴增效率。

       通常,人們用靶基因與內(nèi)參基因平行擴增和用內(nèi)參對靶基因測試值歸一化的處理方法來解釋樣本間定量差異。無論相對定量還是絕對定量分析,其前體都是假設這靶、參的擴增受到相同的抑制程度。但實際情況是,部分生物樣本可能含有的PCR抑制劑,在內(nèi)參樣本中不存在,而據(jù)此構(gòu)建的標準曲線作為定量基準,導致測試樣本中mRNA水平低估,從而扭曲歸一化和定量分析結(jié)果。

蜂蜜瀏覽器_實時熒光定量PCR反應抑制劑測試.jpg


       對16S qPCR絕對定量法檢測細菌拷貝數(shù)的實驗結(jié)果顯示,無論是來自標準菌株或是土壤中細菌的DNA樣本,當反應體系中腐殖酸終濃度達到50ng/μL,與不加腐殖酸的對照組相比,得出的細菌拷貝數(shù)具有顯著差異,證實腐殖酸對qPCR 反應確有明顯抑制作用。原因在于構(gòu)建qPCR標準曲線用標準品不含腐殖酸而測試樣本含腐殖酸,二者被分別安排在兩個獨立樣本孔中進行常規(guī)單重定量PCR反應。因PCR反應效率不同造成定量結(jié)果偏差。相反,若采用雙重實時熒光定量PCR(即多重實時熒光定量PCR,duplex qPCR)設計反應體系,標準品和樣本DNA是在同一個樣本孔中進行PCR反應,使得PCR抑制物對樣品兩種模板PCR反應效率抑制效應相同,從而有效規(guī)避了腐殖酸對細菌16S拷貝數(shù)定量的巨大干擾效應。

       包括生物樣品自身的天然組分、核酸提取純化操作用的試劑和實驗器具攜帶的各種化合物,凡是影響DNA聚合酶的活性,干擾模板與DNA聚合酶及引物的結(jié)合,抑制PCR擴增的化合物、鹽分,均視為為PCR抑制劑。

表1 實時熒光定量PCR實驗常見PCR反應抑制物

干擾物類型

污染來源

常見污染物

內(nèi)源性干擾物

(endogenous   interferent)

血    液

血紅蛋白(>1mg/mL),氯高鐵血紅素(Hemin)   (>0.1 ng/μL),免疫球蛋白G(IgG);

甘油三酯(TG)、鐵離子、膽紅素等

動物組織

蛋白酶、肌紅蛋白、膠原質(zhì)、黑色素、脂肪、糖原、膽汁鹽酸;

基因組DNA濃度和DNA結(jié)合蛋白等

植物組織

腐殖酸(50ng/μL)、丹寧酸/鞣酸(Tannic   acid)(0.1ng/μL)、多糖、多酚等

藥    物

抗生素、抗病毒藥、激素類等

牛奶骨頭

蛋白酶、ca2+等

尿    液

尿素(>20mM)

糞    便

植物多糖、膽酸鹽等

外源性干擾物

(exogenous   interferent)

提取試劑

硫氰酸胍、鹽酸胍、苯酚(>0.2%)、氯仿、十二烷基硫酸鈉(SDS)   (>0.005%)等

有機溶劑

異丙醇(>0.15   IU/mL)、二甲基亞砜(DMSO)、甲酰胺(DMF)、甘油、聚乙二醇(PEG) ;

乙酸鈉(>5mM)、溴酚蘭等

抗 凝 劑

肝素(>0.1U/mL)、乙二胺四乙酸(EDTA)   (>0.5 mM)等

消 毒 劑

醇類/乙醇(>1%)、酚類/苯酚(>0.2%)、過氧化物類、強酸HCL、強堿NaOH等

土壤植物

礦物質(zhì)、有機質(zhì)、腐殖質(zhì)等

實驗器具

紫外線照射老化的聚丙烯材質(zhì)樣品管、樣本采集容器、一次性塑膠手套上的滑石粉等

       國外的一項專門調(diào)查表明,約6%的研究人員關(guān)注了實驗所用核酸樣本是否存在抑制劑的問題。

 

二、MIQE指南對qPCR實驗中微量紫外可見光度計核酸測定的要求

       MIQE指南的MIQE checklist列表中,涉及到紫外可見光度計應用的是核酸提取和反轉(zhuǎn)錄兩個操作步驟。

       雖然列舉的是mRNA,但其指則適用的樣品,應理解為包括全部DNA(包括基因組DNA、質(zhì)粒、mtDNA、STR等)和RNA(涵蓋組織mRNA、miRNA、lnRNA、shRNA及病毒RNA等)類型樣品,應用范圍既包括核酸定量,也包攬SNP檢測應用。

       表中E(essential information)標記項屬須與發(fā)表文稿一起提交的基本信息(可理解為強制要求);而D(Desirable information)標記項為根據(jù)實驗條件盡可能提交的資料。

表2 實時熒光定量PCR實驗核酸質(zhì)量控制的MIQE checklist

Item to check(應檢查的項目)

Importance

Nucleic acid extraction(核酸提取步驟)

Procedure   and/or instrumentation(核酸提取程序和/或所用儀器)

E

Name of   kit and details of any modifications(核酸提取試劑盒及一切操作改動)

E

Details   of DNase or RNase treatment(DNase或RNase處理的細節(jié))

E

Contamination assessment (DNA or RNA)(DNA或RNA污染評估過程)

E

Nucleic acid quantification(核酸定量)

E

Instrument and method(核酸定量所用儀器和方法)

E

RNA   integrity: method/instrument(RNA完整性檢測方法/所用儀器)

E

RIN/RQI   or Cq of 3' and 5' transcripts(RNA的RIN或RQI值或Cq的3’和5’轉(zhuǎn)錄本)

E

Inhibition   testing (Cq dilutions, spike, or other)(PCR抑制測試情況Cq稀釋度、峰值等)

E

Source of   additional reagents used(核酸提取所用額外試劑的來源)

D

Purity   (A260/A280)(核酸的A260/A280純度檢測)

D

Yield(核酸產(chǎn)量)

D

Electrophoresis   traces(凝膠電泳檢測結(jié)果)

D

Reverse transcription(反轉(zhuǎn)錄步驟)

Complete   reaction conditions(RT完整反應條件)

E

Amount of RNA and reaction volume(RNA用量和反應體系體積)

E

Priming oligonucleotide (if using GSP) and   concentration(寡核苷酸引物和濃度)

E

Reverse   transcriptase and concentration(反轉(zhuǎn)錄酶及其濃度)

E

Temperature   and time(RT反應的溫度和時間)

E

Manufacturer   of reagents and catalogue numbers(RT試劑的廠商和貨號)

D

Storage   conditions of cDNA(cDNA保存條件)

D

Cqs with   and without reverse transcription(RT后樣品和未進行RT的樣品的Cq值比較)

D

       綜合表2內(nèi)容和QC of Nucleic Acids一節(jié)的論述,MIQE指南對qPCR實驗中用微量紫外可見光度計進行核酸測定的目的、要素和要求,大致可歸納為以下幾點。

2.1 核酸樣品污染情況評估

       MIQE指南規(guī)定,qPCR實驗須報告所用核酸樣品中的基因組DNA/RNA、苯酚及其他PCR反應抑制劑殘留的評估情況。而紫外可見光度計的A260/A280比值測定是一簡便而重要的評估方法。其理論依據(jù)是:在中性pH溶液中測量核酸樣品,高純度的RNA溶液的A260/A280比值為2.0,而DNA這一比值為1.8,苯酚的紫外吸收峰為270nm。如RNA樣品中存在基因組DNA的混入(降低A260讀數(shù))或苯酚殘留,抬升A280測試值,導致RNA的A260 /A280比值降低。 

2.2 核酸的含量測定

       在qPCR實驗要比較不同靶標定量的結(jié)果,首先要確保qPCR實驗流程幾個關(guān)鍵環(huán)節(jié)核酸樣品中的總RNA、cDNA、DNA模板用量大致相同。因此,紫外可見分光光度計A260測定核酸濃度為必選動作。

MIQE指南的有關(guān)內(nèi)容有:

1)核酸(DNA/RNA)提取產(chǎn)量(注:測定所獲的高品質(zhì)核酸OD值,根據(jù)dsDNA、RNA的μg/ μL濃度及提取物總體積計算核酸提取總產(chǎn)量,便于分配后續(xù)各項應用中核酸用量);

2)反轉(zhuǎn)錄時總RNA用量(注:市面反轉(zhuǎn)錄試劑盒常建議按RT反應體系20μL:2μg總 RNA的投料比例配置RT反應體系);

3)qPCR反應核酸模板定量(DNA/cDNA)定量(注:不同基因的cDNA合成效率不一,通常RT試劑盒無法給出cDNA產(chǎn)量值。A260測定獲得高品質(zhì)cDNA產(chǎn)物濃度和總產(chǎn)量,便于規(guī)劃qPCR反應的cDNA用量);

4)qPCR反應寡核苷酸引物/探針濃度測定(根據(jù)引物合成廠家配套說明和實際A260測定結(jié)果,基于cDNA投料量來優(yōu)化反應體系中引物體積用量,確保擴增效率和擴增特異性);

5)核酸測定所用儀器及方法

       指南中,NanoDrop微量紫外可見分光光度計作為把核酸定量的首選方法。低濃度RNA樣品測定則推薦熒光RNA結(jié)合染料法(如RiboGreen和Qubit 系列熒光計)。(待續(xù))